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          qPCR的核心原理

          更新時間:2025-09-26點擊次數:216

          讓小編來詳細解析一下qPCR(實時熒光定量PCR)的原理。這是一項在分子生物學、醫學診斷、生物技術等領域的核心技術。

           一、qPCR的核心原理:實時監測與定量

          簡單來說,qPCR是一種在PCR(聚合酶鏈式反應)擴增過程中,通過熒光信號對DNA模板進行實時監測和定量的技術。

          它解決了傳統PCR只能進行終點檢測(擴增結束后通過電泳看條帶)而無法精確定量的問題。

          二、兩種主流的信號產生機制:

           1. 非特異性檢測:DNA結合染料法(如SYBR Green

          - 原理:SYBR Green是一種能特異性地嵌入雙鏈DNAdsDNA)小溝中的熒光染料。當它與dsDNA結合后,熒光強度會顯著增強。

          - 過程:在每輪PCR的延伸階段,新合成的雙鏈DNA會結合染料,并發出熒光。熒光強度與反應體系中的雙鏈DNA總量成正比。

          - 優點:成本低,使用方便,無需設計探針,適用于任何PCR擴增。

          - 缺點:特異性較低。染料會結合任何雙鏈DNA,包括非特異性擴增產物和引物二聚體,從而產生假陽性信號。因此必須通過熔解曲線分析來驗證擴增產物的特異性。

           2. 特異性檢測:水解探針法(如TaqMan探針)

          - 原理:該技術使用一個序列特異性的寡核苷酸探針。探針的5‘端帶有一個報告熒光基團,3’端帶有一個淬滅熒光基團。

          - 過程:

              1.  當探針完整時,由于報告基團和淬滅基團距離很近,發生熒光共振能量轉移,報告基團的熒光被淬滅。

              2.  PCR擴增時,當引物退火,探針也會特異性地結合到模板上。

              3.  Taq酶在延伸過程中,利用其5‘→3’外切核酸酶活性將探針水解,使報告基團與淬滅基團分離。

              4.  報告基團隨即發出熒光。

          - 優點:特異性ji。只有靶序列被擴增時才會產生熒光信號,有效避免了非特異性擴增的干擾。

          - 缺點:成本較高,需要為每個靶基因精心設計并合成探針。

           、如何定量?—— Ct值的概念

          qPCR定量的關鍵在于 Ct值。

          - 定義:Ct值 是指每個反應管內的熒光信號達到設定的閾值時所經歷的循環數。

          - 意義:模板DNA的起始拷貝數越多,達到熒光閾值所需的擴增循環數就越少,即Ct值越小。反之,起始拷貝數越少,Ct值越大。

          - 定量基礎:理論上,PCR每個循環產物量翻倍(指數增長期)。因此,兩個樣品之間的Ct值相差1,意味著起始模板量相差約2倍。

          通過已知濃度的標準品繪制標準曲線,就可以根據未知樣品的Ct值精確計算出其起始模板量。定量方法主要有絕對定量和相對定量。

            總結

          qPCR技術憑借其高靈敏度、高特異性、精確定量和操作便捷的特點,已經成為現代生命科學研究和分子診斷的基石技術。從基礎科研的基因功能探索,到臨床的疾病診斷與監控,再到食品安全檢測,其應用無處不在。理解其原理是正確進行實驗設計和數據分析的關鍵。

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